{
 "页数": 2,
 "全文字符数": 1053,
 "体系配置候选": [
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   "页": 1,
   "原文": "产品组分"
  },
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   "原文": "1. 按要求保存试剂盒中的组分，T Reagent、10× T Buffer 存放于-20℃, 其余试剂存放于4℃, 注意吸附磁珠不能冻融。"
  }
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 "反应程序候选": [
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   "原文": "T Reagent、10× T Buffer 于-20±5℃保存；其余成分存放于2-8℃。磁珠切勿冻融。"
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   "原文": "37℃酶切2h。"
  },
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   "页": 1,
   "原文": "将清洗完的磁珠加100μL Buffer Ⅰ重悬，然后加入步骤1）中稀释的酶切样品，混匀仪室温混匀30min。"
  },
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   "原文": "取25μL 预热至80℃的EB Buffer 和磁珠充分混匀，80℃加热4min，磁性分离保留上清至标记好的无核酸酶离心管中，"
  },
  {
   "页": 2,
   "原文": "1. 按要求保存试剂盒中的组分，T Reagent、10× T Buffer 存放于-20℃, 其余试剂存放于4℃, 注意吸附磁珠不能冻融。"
  }
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 "文中货号": [],
 "逐页文本": [
  "货号：BP-11-10\nPolyA 长度分布检测前处理试剂盒\n2025V02\n产品组分\n组分\n体积\n吸附磁珠\n1mL\nT Reagent\n60μL\n10×T Buffer\n120μL\nBuffer Ⅰ\n6mL\nBuffer Ⅱ\n20mL\nEB Buffer\n1mL*2\nRNase-freeddH2O\n1mL*2\n保存条件\nT Reagent、10× T Buffer 于-20±5℃保存；其余成分存放于2-8℃。磁珠切勿冻融。\n操作流程\n1. T Reagent 酶切样品\n建议酶切体系（50μL）：\n试剂\n投入量\nT Reagent\n5μL\nRNA样品\n50μg\n10×T Buffer\n5μL\nRNase-freeddH2O\nUpto50μL\n37℃酶切2h。\n2. 吸附磁珠回收\n1）酶切样品处理\n酶切完的样品+50μL Buffer Ⅰ混匀。\n2）磁珠准备\n提前将磁珠取出，平衡至室温。然后将磁珠混匀后，取100μL 磁珠加入无核酸酶离心管中，放至磁力架，磁性分离去上\n清，随后从磁力架取下。\n3）磁珠处理\n上述管中加入100μL Buffer Ⅰ,充分混匀后，磁性分离去上清，重复2 次。\n4）上样\n将清洗完的磁珠加100μL Buffer Ⅰ重悬，然后加入步骤1）中稀释的酶切样品，混匀仪室温混匀30min。\n5）洗杂\n上述管中加入200μL Buffer Ⅱ,磁性分离去上清，清洗磁珠4 次，随后从磁力架取下。\n6）洗脱\n取25μL 预热至80℃的EB Buffer 和磁珠充分混匀，80℃加热4min，磁性分离保留上清至标记好的无核酸酶离心管中，\n重复此步骤2 次，最后将两次得到的上清混合，再次置于磁力架吸附，确保去除少量残留磁珠。\n",
  "货号：BP-11-10\nPolyA 长度分布检测前处理试剂盒\n2025V02\n注意：制备的样品中若含有磁珠会对检测设备、色谱柱造成伤害，为避免发生此类情况，吸取上清时避免触碰到磁珠，以上\n制备的样品体积足够后续的应用。\n注意事项\n1. 按要求保存试剂盒中的组分，T Reagent、10× T Buffer 存放于-20℃, 其余试剂存放于4℃, 注意吸附磁珠不能冻融。\n2. 本试剂盒中提供的磁珠、试剂等材料经过了大量筛选验证，为保证处理效果，请勿随意更换试剂盒中提供的材料，否则将\n无法保证实验效果。\n3. 本试剂盒处理后的样品应当及时上机测试，样品存放时间尽可能小于1 周。\n4. 实验过程中注意个人防护。\n5. 使用前应混匀，避免反复冻融。\n"
 ],
 "官网品名": "PolyA 尾长度分布检测前处理试剂盒【mRNA质量控制 】",
 "详情页": "https://www.biori.com/product/44744",
 "说明书URL": "https://qipeima.oss-cn-shenzhen.aliyuncs.com/uploads/qipeima/299/05aa6382/25/07/a6658e77a6377b4583731b71b970eb137c199fba.pdf",
 "说明书文件名": "BP-11-10 说明书",
 "PDF字节": 756377
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